Навигация по странице:
|
Деконтаминация. Деконтаминация это процесс уничтожения микроорганизмов в целях обеспечения инфекционной безопасности. Деконтаминация изделий медицинского назначения складывается из дезинфекции, предстерилизационной обработки и стерилизации. Дезинфекция
|
Деконтаминация
Деконтаминация — это процесс уничтожения микроорганизмов в целях обеспечения инфекционной безопасности. Деконтаминация изделий медицинского назначения складывается из дезинфекции, предстерилизационной обработки и стерилизации.
Дезинфекция. Уничтожение патогенных микроорганизмов с целью предотвращения распространения патогенных микробов во внешней среде, заражения ими пациентов и медицинского персонала называется дезинфекцией. При химической дезинфекции изделия погружают в 3 % раствор хлорамина на 60 мин, 6% раствор перекиси водорода с 0,5 % раствором моющего средства, 2,5 % спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата (гибитана) или 0,5% дезоксоном-1 на 30 мин, 1,5% раствор гипохлорида кальция на 60 мин.
Для дезинфекции изделий, имеющих внутренние каналы, раствор дезинфицирующих средств в объеме 5—10 мл пропускают через канал для удаления остатков крови, сыворотки и других биологических жидкостей сразу после использования. Затем изделие полностью погружают в дезинфицирующий раствор.
Предстерилизационная обработка. После дезинфекции изделия медицинского назначения подвергают предстерилизационной обработке — удалению белковых, жировых, механических загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов.
Для приготовления 1 л моющего раствора берут 5 г синтетического моющего средства («Лотос», «Прогресс», «Астра»), 15 г 33 % пергидроля и 980 г воды питьевой. После этого изделия ополаскивают проточной водой в течение 30 с, замачивают в моющем растворе при температуре 40 °С с полным погружением на 15 мин. Затем каждое изделие моется в моющем растворе с помощью ерша или ватно-марлевого тампона 30 с, ополаскивается под проточной водой 5— 10 мин. После этого изделия ополаскивают дистиллированной водой 30 с и сушат в сушильном шкафу при температуре 85 °С или на открытом воздухе до полного исчезновения влаги.
В настоящее время часто используют методы, сочетающие одновременно дезинфекцию и предстерилизационную очистку. Для этих целей используют 2% виркон (экспозиция 10 мин); 4% лизетол (экспозиция 30 мин); 1,5 % лизоформин-3000; 0,5 % бланизол (экспозиция 30 мин).
Для контроля качества предстерилизационной обработки отбирают 1 % общего количества инструментов и тестируют их с использованием различных проб. Наиболее часто используют универсальную азопирамовую пробу. Рабочий раствор азопирама готовят смешиванием 1 : 1 равных объемов исходного раствора азопирама (смесь 10 г амидопирина и 0,15 г хлорида анилина растворяют в 50 мл 96 % спирта) и 3 % перекиси водорода. Рабочим раствором обрабатывают исследуемые материалы (инструменты, иглы, катетеры, шприцы и др.), через 1 мин читают пробу. При положительной азопирамовой пробе выявляют остатки крови (розово-синее окрашивание), хлорамина, моющего раствора, окислителей, ржавчины (бурое окрашивание). При положительной пробе вся партия изделий подлежит повторной обработке.
Стерилизация. Уничтожение микроорганизмов всех видов, патогенных и непатогенных, называется стерилизацией. Ее проводят различными способами — паром под давлением, сухим горячим воздухом (сухожаровой шкаф), газами (окись этилена, бромистый метил), растворами химических веществ, радиоактивным излучением.
Операционное белье и перевязочный материал готовят заблаговременно в нужном количестве. Фельдшер должен заранее позаботиться о необходимом количестве перевязочного материала, раскроить его и изготовить. Белье также должно соответствовать размерам.
В ходе операции и при перевязках применяются гигроскопическая марля и вата. Вата готовится в виде кусков размером 33 х20 см или широких лент шириной 30 см и длиной до 1,5 м, свернутых рулоном. Для обработки кожи используют ватные шарики, которые плотно наматывают на деревянные палочки длиной 10— 15 см. Их укладывают в пачки по 20 — 25 шт. и заворачивают в марлю.
Марлю складывают квадратами длиной 1 м и шириной 70 — 80 см. Из нее готовят большие, средние и малые салфетки. Из одного куска марли можно сделать две больших, четыре средних и шесть малых салфеток. Для удобства стерилизации и учета расхода каждый вид салфеток и тампонов связывают по 10 шт. полоской марли. Салфетки применяют для осушения раны, защиты кожи, наложения повязок. При изготовлении салфеток края всех отрезанных кусков обязательно загибают внутрь на 2 см, складывают пополам вдоль поперечной, а затем и продольной нити.
Для остановки кровотечения, удаления гноя, поддержания внутренних органов применяют большие, средние и малые тампоны. Самые узкие их них — турунды.
Большой тампон из куска марли с загнутыми краями дважды складывается пополам. Затем по длине его складывают так, чтобы одна половина была длиннее другой; образовавшуюся полоску складывают еще раз пополам и выступающий край заворачивают на тампон (он служит для захватывания тампона во время операции). Для среднего тампона заворачивают края марли на 3 — 5 см, складывают по поперечной линии, а лишь затем — вдоль продольной. Во время операции его можно сделать из средней салфетки.
Изготовление малого тампона начинают с подворачивания на 1 — 2 см одного из коротких слоев куска марли, затем подворачивают внутрь с некоторым заходом друг на друга более длинные края и повторно складывают их пополам в продольном и поперечном направлениях.
Турунды готовят из полосок марли или бинта шириной 5 см и длиной 40 — 50 см. Конец бинта заворачивается внутрь, а края бинта складываются навстречу друг другу до соприкосновения. Для образования ровного края сложенную полоску в натянутом состоянии прокатывают через край стола, затем полоску складывают еще раз и вновь протягивают через край стола. Полученную марлевую полоску наматывают на три пальца, а свободный конец подворачивают внутрь образовавшегося кольца.
Для осушения ран от крови и гноя применяют марлевые шарики.
В комплект операционного белья входят халаты, шапочки, маски, простыни, полотенца, бахилы. Халат должен быть закрытым спереди, с завязками сзади, без пояса, имеющий на руках по две длинных завязки. Его складывают продольно пополам дважды, рукавами внутрь, затем не туго скатывают в рулон начиная от подола к воротнику.
Простыни загибают по узкому краю на 50 см, затем складывают вдоль вчетверо и не туго скатывают, начиная с незагнутого конца. Полотенца складывают вчетверо.
Приготовленные к стерилизации перевязочный материал и операционное белье укладывают в биксы. Биксы могут быть с фильтрами (стерильность материала сохраняется в них в течение 20 сут) и без фильтров, с отверстиями на боковой поверхности (стерильный материал хранится 3 сут). При подготовке бикса к стерилизации необходимо проверить все детали на герметичность и закрепить металлический пояс так, чтобы отверстия корпуса были открыты. Затем бикс изнутри и снаружи дважды протирают 0,5 % раствором нашатырного спирта или 1 % раствором хлорамина. Дно и стенки застилают большой салфеткой или простыней. Весь материал для стерилизации укладывается рыхло, параллельно струе горячего воздуха в автоклаве и перпендикулярно крышке и дну бикса. В каждый бикс помещают три индикатора стерильности — один на простыню, выстилающую дно бикса, второй в центр бикса и третий — под его крышку. К крышке бикса привязывают бирку с указанием отделения, кабинета, содержимого бикса, даты укладки, фамилии медицинской сестры.
Укладка биксов может быть осуществлена универсальным, целенаправленным, видовым способами. Для небольших операционных с малым количеством операций осуществляется универсальная укладка, при которой в бикс закладывается практически весь необходимый материал работы перевязочной или малой операционной. Его располагают вертикально, секторально и послойно; в каждом слое и перевязочный материал, и операционное белье (халаты, маски, полотенца, простыни).
После укладки операционного белья и перевязочного материала в бикс помещают индикаторы стерильности. После этого края простыни или салфетки, выстилающей бикс, складывают. Поверх простыни укладывают халат, пояс, маска, салфетка и полотенце для рук, предназначенные для операционной медицинской сестры, в них также укладывают индикатор, крышка бикса плотно закрывается.
При видовой укладке (наиболее распространенной) в каждый бикс кладут только один тип материала: простыни, халаты, перевязочный материал, перчатки и т.д. Эта укладка используется при большом объеме хирургической работы.
Стерилизацию осуществляют в автоклавах — паровых котлах высокого давления — паром под давлением в двух режимах.
Первый режим (основной) при давлении 2 атм, температуре 132 °С, продолжительности стерилизации 20 мин (с момента достижения в паровой камере автоклава давления в 2 атм) применяют для стерилизации изделий из бязи, марли, стекла, коррозионно-устойчивого металла.
Второй режим (щадящий) при температуре 120 °С и давлении 1,1 атм в течение 45 мин рекомендуется для изделий из тонкой резины, латекса, отдельных видов полимеров.
Неисправность автоклава и неумение пользоваться им могут привести к ожогам паром и взрыву котла. К работе с автоклавом допускают только медицинских работников среднего звена, прошедших специальную подготовку и сдавших экзамен по технике безопасности.
Для текущих перевязок материалы (салфетки, готовые ватно-марлевые повязки, шарики) удобно стерилизовать в отдельном конверте (пакете) из простыни или наволочки в количестве, необходимом надень работы перевязочной. В бикс помещают до трех конвертов. Перед началом работы извлекают один конверт, разворачивают его на стерильном столе и добавляют простерилизованный инструментарий. Если не хватает металлических биксов, то автоклавирование материалов проводят в двойных мешках из плотного полотна с завязками в виде кисета. Невскрытые биксы (мешки) подлежат повторной стерилизации через 3 сут. Стерильность материала в биксе с момента вскрытия сохраняется не более 6 ч, поэтому обязательно необходимо отмечать время вскрытия бикса.
Стерилизация инструментов. Стерилизация воздушным методом (основной способ) осуществляется в сухожаровых шкафах. Инструменты раскладывают на поднос, который помещают в сухожаровой шкаф и стерилизуют при температуре 180°С в течение 1 ч, при температуре 160°С — 2 ч.
При стерилизации химическим методом — «холодной» стерилизации — температура не должна превышать температуру коагуляции белка — 60 °С. Изделия полностью погружают в раствор, находящийся в эмалированных, стеклянных или пластмассовых емкостях. Хирургические инструменты из коррозионно-устойчивых материалов и сплавов, изделия из резины, пластических масс, в том числе с металлическими частями, стерилизуют с использованием раствора перекиси водорода при температуре 18 °С в течение 360 мин, 1 % раствора дезоксона-1 при температуре 18 °С в течение 45 мин.
Газовая стерилизация применяется для эндоскопических инструментов, аппаратов экстракорпорального кровообращения, изделий из пластмассы, кетгута. Для этих целей чаще используют пары формалина в автоматических газовых камерах, экспозиция составляет 48 ч.
Радиационная стерилизация применяется только на предприятиях медицинской промышленности, выпускающих изделия одноразового пользования — шовный материал, эндопротезы, одноразовые шприцы, катетеры.
Стерилизация перчаток. В настоящее время все чаще используют перчатки, стерилизованные в заводских условиях. В лечебных учреждениях применяют несколько способов стерилизации.
Метод автоклавирования. Перчатки пересыпают стерильным тальком, каждую перчатку заворачивают в марлю, чтобы они не соприкасались друг с другом, закладывают в бикс и автоклавируют при температуре 120°С и давлении 1,1 атм 45 мин.
«Холодная» стерилизация 6% раствором перекиси водорода. Перчатки замачивают в 6 % растворе перекиси водорода на 6 ч. После этого перчатки извлекают из раствора стерильным инструментом и погружают на 5 мин в дистиллированную воду. Затем их высушивают, пересыпают сухим стерильным тальком, перекладывают марлей и хранят в стерильном биксе готовыми к употреблению 3 сут.
После использования перчатки помещают в 3 % раствор хлорамина на 60 мин, затем тщательно моют, высушивают и проверяют на герметичность. После первого применения 50 % перчаток оказываются поврежденными, причем многие дефекты не видны на глаз, поэтому повторная стерилизация перчаток нежелательна.
Стерилизация щеток для мытья рук. Щетки стерилизуют кипячением в течение 15 мин после предварительного мытья с мылом. Их хранят в стерильной банке и достают оттуда стерильным корнцангом.
Стерилизация шовного материала. В амбулаторных и стационарных условиях проще и удобнее пользоваться ампульным готовым к употреблению шовным материалом.
При стерилизации шовного материала (шелка, капрона, лавсана и др.) в ЛПУ применяют автоклавирование. Мотки шовного материала моют с мылом под краном, прополаскивают и кипятят в дистиллированной воде в течение 15 мин, высушивают и помешают в автоклав на 20 мин под давлением 2 атм. Прошедший стерилизацию шовный материал хранят в 96 % спирте в герметически закрытой стерильной емкости с притертыми пробками.
Существуют различные способы стерилизации рассасывающегося биологического шовного материала — кетгута (метод Клау-диса, метод Ситковского, стерилизация в спиртовом растворе и в водном растворе люголя). Однако стерилизация кетгута сложна из-за опасности загрязнения его анаэробной микрофлорой. В связи с этим в современных условиях рекомендуется пользоваться кетгутом, простерилизованным в заводских условиях.
Методы контроля стерильности. Существуют два метода контроля стерильности — прямой и непрямой.
Прямой метод — биологический контроль — самый надежный. Берут образцы стерилизовавшегося материала (инструментов, перевязочного материала, операционного белья, рук медицинского персонала, кожи операционного поля) и сеют на питательные среды. Если нет роста микробов — материал стерилен, если есть — не стерилен. Недостаток метода состоит в том, что ответ получают только через 48 ч и более, а материал считается стерильным после автоклавирования в биксе в течение 48 — 72 ч. Бактериологический контроль стерильности проводится не реже 1 раза в месяц.
В повседневной работе широко используют непрямые методы контроля стерильности — физический и химический, которые позволяют быстро получить результат и используются при стерилизации.
Физический метод основан на плавлении кристаллических веществ при определенной температуре. Современные индикаторы стерильности запаяны в ампулы, каждое вещество имеет свою точку плавления. В качестве индикаторов применяют бензойную кислоту (120°С), которая меняет цвет с серо-голубого до спелой сливы, и мочевину (132°С) — с розового до спелой сливы. Тиомочевина, янтарная кислота и винно-каменная кислота при 180 °С меняют цвет с белого на зеленовато-желтый. Недостаток этого способа контроля состоит в том, что нельзя быть уверенным, что необходимая температура была одинаковой на протяжении всего времени стерилизации.
Химический метод в настоящее время применяется наиболее часто. Используют термоиндикаторные ленты ИС-120 (если необходимая температура стерилизации 120 °С). Лента под воздействием соответствующей температуры изменяет свой цвет с белого на коричневый. По окончании стерилизации цвет индикаторной ленты обязательно сравнивают с эталоном. Метод имеет тот же недостаток, что и физический.
|
|
|
|
Скачать 21.62 Kb.
