Главная страница
Культура
Искусство
Языки
Языкознание
Вычислительная техника
Информатика
Финансы
Экономика
Биология
Сельское хозяйство
Психология
Ветеринария
Медицина
Юриспруденция
Право
Физика
История
Экология
Промышленность
Энергетика
Этика
Связь
Автоматика
Математика
Электротехника
Философия
Религия
Логика
Химия
Социология
Политология
Геология

Наука о взаимоотношениях врача и больного, о долге и обязанностях врача носит название врачебной деонтологии



Скачать 0.65 Mb.
НазваниеНаука о взаимоотношениях врача и больного, о долге и обязанностях врача носит название врачебной деонтологии
Анкорotvety_na_bilety_1.doc
Дата29.01.2018
Размер0.65 Mb.
Формат файлаdoc
Имя файлаotvety_na_bilety_1.doc
ТипДокументы
#16032
КатегорияМедицина
страница1 из 11
  1   2   3   4   5   6   7   8   9   10   11

Часть 1.
4. Наука о взаимоотношениях врача и больного, о долге и обязанностях врача носит название врачебной деонтологии. Медицинскую деонтологию можно также определить как совокупность этических норм выполнения медицинскими работниками своих профессиональных обязанностей. Одним из основных деонтологических требований являются высокая квалификация врача, постоянное стремление к совершенствованию своих знаний и профессионального искусства. Хороший врач должен знать все новейшие достижения медицины, постоянно читать новые книги и медицинские журналы по своему профилю, посещать заседания научных медицинских обществ, конференции, активно участвовать в них, быть хорошо осведомленным в смежных дисциплинах. Авторитет врача в значительной степени основывается на его отношении к больному, чуткости, участии. Хорошо известно, что равнодушие врача снижает доверие к нему больного и может резко сказаться на ходе заболевания. Если же врач пользуется большим авторитетом и уважением, если больной видит участие с его стороны, живое желание помочь, избавить от страданий, то нередко лечение оказывается гораздо более эффективным. В любую минуту, в любой трудный час врач должен сохранять уверенность и внушать ее больному и окружающему медицинскому персоналу, что особенно важно в неотложных случаях. В разговоре с больными или коллегами у постели больного врач должен избегать применения непонятных для больного слов и медицинских терминов, которые могут быть превратно, в негативном плане, им истолкованы. Врачебная деонтология включает необходимость сохранения врачебной тайны. Все сведения о больном, характере заболевания и т.д. врач должен держать в тайне, иначе он может повредить больному, причинив ему моральный, а в некоторых случаях и материальный ущерб. Вопросы врачебной деонтологии также тесно соприкасаются с профессиональной этикой. Между врачами отношения должны быть действительно товарищескими, основываться на взаимной поддержке и помощи для блага больного. Если врач обнаружил ошибку или неточность в назначениях своего коллеги, он может и должен их исправить, однако в такой форме, чтобы не подорвать у больного веру в медицину и успех лечения.
6. Источники инфекции у хирургических больных, меры ее профилактики.
Микробы в рану могут попасть как изнутри, так и снаружи. Эндогенной называется инфекция, находящаяся внутри организма или на кожных покровах и слизистых. Такая инфекция в рану может попасть контактным путем, лимфогенным путем и гематогенным путем. Источниками эндогенной инфекции являются кариесные зубы очаги хрон. инфекции во внутренних органах-холециститы, бронхиты, пиелонефриты и др.
Наибольшее значение имеет экзогенная инфекция- это инфекция, попадающая в рану из внешней среды. Существуют 3 пути передачи энкзогеенной инфекции: 1.Воздушно-капельный путь- из воздуха, с брызгами слюны, при чихании, и др.; 2.Контактный путь-с предметов соприкасающихся с раной; 3.Имплантационный путь- с предметов, оставляемых в ране - дренажи, шовный материал, протезы сосудов, искусственные материалы и др.;
1.Предупреждение воздушно-капельной инфекции.
Предупреждение воздушной инфекции прежде всего зависит от правильной организации хирургического отделения, перевязочных, операционных.
В хирургическом отделении палаты должны быть на 2-4 койки, площадь на 1 койку должна быть не менее 6,5-7,5 м.кв. Полы, стены, мебель в палатах должна легко подвергаться уборке и дезинфекции.
В условиях небольших больниц, как районная больница, имеется одно хирургическое отделение, но при этом обязательно отделить "гнойных"больных от "чистых",в идеале иметь две перевязочные- для гнойных и чистых перевязок, а если нет возможности иметь две перевязочные, то вначале перевязываются "чистые" больные, затем "гнойные", после чего перевязочная кварцуется. В перевязочных необходимо работать в халатах, чепчиках, масках.
Асептика наиболее тщательно должна соблюдаться в операционном блоке. Операционная должна быть отделена от других подразделений больницы. В операционном блоке имеются операционные, предоперационные, хозяйственные комнаты для персонала, автоклавная.

7. Асептика — комплексмероприятий, направленных на предупреждение попадания возбудителей инфекции в рану или организм человека. Микробы могут быть грамотрицательными (гонококки, менингококки, протей) и грамположительными (стафилококки, стрептококки), аэробными (кишечная палочка, стафилококки, стрептококки) и анаэробными (пептококки, клостридии), спорообразующими (клостридии. палочка столбняка) и неспоро
образующими (пептококки, фузобактерии). При определенных условиях воспаление может быть вызвано условно-патогенными микробами: клебсиела, протей вульгарис и др). Один микроб вызывает моноинфекцию, несколько – смешанную инфекцию.Микробы могут проникать в рану из внешней среды- экзогенное инфицирование, из внутренней среды при наличии очагов воспаления- эндогенное инфицирование. Стафилокк чаще вызывает локализованные гнойно-воспалительные заболевания (фурун
кул, гидраденит итд), остеомиелит, абсцессы. Стрептококк – рожистое воспаление, холецистит, пиелонефрит и др. Гонококки – гнойный эндометрит, аднексит, пельвиоперитонит (восходящая инфекция). Кишечная палочка – аппендицит, гнойный перитонит, холецистит и др. Протей – гнилостный распад мягких тканей. Синегнойная палочка – гнойное воспаление. Клостридии – газовая гангрена. Все микробы могут вызвать сепсис. Стафилококк, кишечная палочка, синегнойная палочка наиболее часто являются возбудителями внутрибольничной инфекции.

Планировка хирургического отделения и требования к ней.
В хирургическом отделении палаты должны быть на 2-4 койки, площадь на 1 койку должна быть не менее 6,5-7,5 м.кв. Полы, стены, мебель в палатах должна легко подвергаться уборке и дезинфекции.
В условиях небольших больниц, как районная больница, имеется одно хирургическое отделение, но при этом обязательно отделить "гнойных"больных от "чистых",в идеале иметь две перевязочные- для гнойных и чистых перевязок,а если нет возможности иметь две перевязочные, то вначале перевязываются "чистые" больные, затем "гнойные", после чего перевязочная кварцуется.В перевязочных необходимо работать в халатах, чепчиках, масках.
Асептика наиболее тщательно должна соблюдаться в операционном блоке.Операционная должна быть отделена от других подразделений больницы. В операционном блоке имеются операционные, предоперационные, хозяйственные комнаты для персонала, автоклавная.

8. Стерилизация хирургических инструментов,перчаток ,эндоскопических приборов. Стерилизация –полное освобождение от микробов и их спор. Дезинфекция – уничтожение патогенной микрофлоры. Стерилизация инструментов: 1 – предстерилизационная подготовка- механическая очистка щётками под проточной водой 5 минут. Замачивают на 15 минут в моющем растворе при 50 градусах (пергидроль 20г,стиральный порошок 5г, вода 975г).Далее в этом растворе моют щётками, затем в течении 5 минут опо
ласкивают под проточной водой, потом в течение 1 минуты дистиллированной водой. Инструменты, загрязнённые гноем, кишечным содержимым замачивают в 0,1% р-ре диоцида, 5% р-ре лизола. Затем в этом же растворе моют щётками, потом промывают проточной водой и т д.Инструменты, после операции у б-го с анаэробной инфекцией замачивают в 6% р-ре перикиси водорода+ 0,5% моющий раствор, моют щётками и кипятят в этом р-ре 90 минут, стерилизуют через сутки, т к прорастают споры. Далее про
водят контроль полноты удаления крови: нанесение з-х капель 1% р-ра бензидина + перекись водорода.Сине-зелёная окраска указывает на остатки крови. 2 – Укладка и подготовка к стерелизации (в биксы с открытой решёткой или на металлические сетки, или заворачивают в специальную бумагу). 3 – Стерилизация проводится в сухожаровых шкафах (180 градусов, 60 минут) или в автоклаве (132 градуса, 2 атм, 20 мин). Стерилизация перчаток: перчатки моют не снимая с рук в тазу с дезрастворами, потом проточной
водой, просушивают. Помещают в 0,5%р-р нашатырного спирта или в моющий р –р. Промывают , просушивают, укладывают для стерилизации.Проводят пробу на скрытую кровь. Стерилизуют в автоклаве (120 градусов, 1,1 атм, 45 мин). Стерилизация эндоскопических приборов осуществляют в газовом стерелизаторе окисью этилена 16 часов при температуре 18 градусов. Также можно использовать 0,5%спиртовой раствор хлоргекседина,3-6%р-р сайдекса 6 часов Перед стерилизацией проводят предстерилизационную
очистку ( удаляют желудочного сока, слизи, крови)

Стерилизация хирургических инструментов.
Инструменты и изделия, загрязненные кровью, содержимым полых органов желудочно-кишечного тракта, а также использованные у больных инфекционными заболеваниями, перед предстерилизационной очисткой в обязательном порядке должны быть подвергнуты дезинфекции.
При химической дезинфекции металлических инструментов проводится их погружение в один из перечисленных растворов:
- 2% тройной раствор в течение 45 мин,
- 1% раствор хлорамина в течение 30 мин,
- 0,5% раствор хлорамина с добавлением 0,5% CMC в течение 15 мин,
- 3% раствор перекиси водорода в течение 80 мин, - 3% раствор перекиси водорода с добавлением 0,5% CMC в течение 30 мин,
- 0,1% раствор сульфохлорантина в течение 30 мин, - 1% раствор дихлор-1 в течение 30 мин, - 2,4% раствор первомура в течение 10 мин, - 3% раствор лизола в течение 60 мин, -1:1000 раствор катамина в течение 30 мин. В качестве одного из методов дезинфекции может использоваться кипячение инструментов в 2% растворе натрия гидрокарбоната в течение 20 мин.
Стерилизация паром под давлением производится после предстерилизационной очистки. Инструментарий, предварительно завернутый в хлопчатобумажную ткань или специальную бумагу, укладывают в бикс. Используется режим I стерилизации.
Стерилизация горячевоздушным методом производится в режиме I или II. Инструменты стерилизуются в биксах или на подносах.
Для стерилизации режущего инструментария наиболее оптимальным является метод стерилизации раствором химических препаратов. Стерилизация производится путем полногo погружения инструмента в раствор 6° о перекиси водорода на 360 мин или 1% раствор дезоксона-1 на 45 мин. Температурный режим при проведении стерилизации данным методом не поддерживается.

Методы стерилизации перчаток.
Стерилизация изделий из резины, хирургических перчаток, мочевых катетеров и т.д. производится согласно ОСТ 42 21-2—85 чаще всего паром под давлением (в II режиме стерилизации). Резиновые изделия, прошедшие дезинфекцию и пред стерилизационную очистку, помещают в стерилизационные коробки различной модификации, тщательно следя за тем чтобы не было перегибов, т.к. после стерилизации они hе расправляются. В условиях поликлиники может пpимeнятьcя стерилизация химическим методом (использование 6% раствора перекиси водорода или 1% раствора дизоксона-1). В промышленных условиях применяются газовый и радиационный методы стерилизации.
Отдельно остановимся на дезинфекции и стерилизации хирургических резиновых перчаток. Перчатки, запачканные гноем, кровью и т.д., в проточной воде не моют! Они предварительно подвергаются дезинфекции путем погружения в один из дезинфицирующих растворов и смесей (см. "Химический метод дезинфекции"). Иногда для дезинфекции можно использовать кипячение в дистиллированной воде в течение 45 мин. После дезинфекции перчатки нуждаются в проведении предстерилизационной очистки по обычной методике ручным способом. В ЦСО для этого применяется специальная машина, которая за цикл обрабатывает до 50 пар перчаток. После этого перчатки сушат на специальных рамах-подставках. Сушка перчаток на батареях центрального отопления категорически запрещается! В условиях стационара наиболее оптимальным методом стерилизации считается применение пара под давлением в режиме II по ОСТ 42-21-2—85. Перед загрузкой перчаток в бикс их обрабатывают тальком или крахмалом, после чего раздельно заворачивают в марлю.
Для стерилизации может применяться и химический метод, но для этого необходимо погрузить в раствор всю внутреннюю и наружную поверхность перчаток одновременно. При этом используют один из следующих растворов:
- 6% раствор перекиси водорода при температуре 50 °С в течение 180 мин,
- 1% раствор дезоксона-1 при температуре 18 °С в течение 45 мин.
После проведения химической стерилизации перчатки дважды погружают на 5 мин в стерильную воду, каждый раз меняя ее, затем стерильным корнцангом переносят в стерильный бикс, выложенный простыней.
В промышленности используется газовый метод стерилизации перчаток (окись этилена).
Методика проведения дезинфекции и предстерилизационной очистки изделий из полимерных материалов (различные виды дренажных трубок, кольца сшивающих аппаратов, бужи и т.д.) такая же, как и для изделий из резины, стерилизация осуществляется паром под давлением в режиме II по ОСТ 42-21-2—85. Так как большинство пластмассовых изделий не переносят высоких температур, их чаще стерилизуют химическим методом при температуре не менее 18 °С с погружением в 6% раствор перекиси водорода в течение 360 мин или 1% раствор дезоксона-1 в течение 45 мин. После стерилизации изделия промывают в стерильной воде и помещают в сте­рильные банки с притертой крышкой или металлические емкости с тройным раствором.
В промышленности для стерилизации изделий из полимерных материалов применяют радиационный и газовый методы.

Стерилизация операционного белья, перевязочнрго материала в автоклаве, контроль стерилизации, индикаторы стерилизации. Стерилизация –полное освобождение от микробов и их спор. Дезинфекция- уничтожение патогенной микрофлоры. I — предстерилизационная подготовка материала: перевязочный материал : салфетки, турунды, и тд готовят из нового материала, таким образом , чтобы нигде не торчали нитки. Перевязочный материал должен быть гигроскопичен, минимально сыпучим, биохими
чески интактным. Операционное белье обрабатывается дезсредствами,стирают, обрабатывают в дезкамерах. Края должны быть подшиты. II — укладка и подготовка материала к стерилизации. Перевязочный материал и операционное белье укладывают в биксы , полотняные мешки.III — стерилизация. Перевязочныйматериали операционное белье стерилизуют в автоклаве в течение 20 мин при давлении 2 атм (температура 132,9 °С).В биксах с открытой решёткой.IV — хранение стерильного материала. По окончании стери
лизации сразу закрывают решетку и переносят их на специальный стол для стерильного материала. Срок хранения если бикс не вскрывался - 48 ч. Материал и белье, стерилизованные в мешках, хранят не более 24 ч. Контроль стерильности: Прямой способ — бактериологический; посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологических тестов проводят раз в 10 дней. Непрямые способы контроля стерильности материала применяют при каждой стерилизации. Для этого используют вещества с оп
ределенной точкой плавления: бензойную кислоту (120 °С), аскорбиновую кислоту (187—192 °С), янтарную кислоту (180—184 °С), тиомочевину (180 °С).

Стерилизация шелка, кетгута.
Различают рассасывающийся и нерассасывающийся шовный материал. Рассасывающиеся нити (кетгут, дексон, пролен, викрил, полиглактин-910, окцелон и др.) поступают в стационар только в стерильном виде в специальной упаковке из фольги и полимеров или в стеклянных ампулах. Стерилизация кетгута в лечебных учреждениях в настоящее время не производится.
К нерассасывающимся шовным материалам относят нити из природных материалов (шелк, лен, хлопок), нити из синтетических материалов (капрон, нейлон, лавсан и т.д.), полимерную леску, металлическую проволоку, металлические скрепки и скобки. В настоящее время почти весь шовный материал поступает в хирургические стационары в стерильном виде в различных упаковках из стекла, полимерной пленки, специальной бумаги, фольги и т.д. В промышленных условиях для стерилизации используются радиационный, газовый и иногда химический методы стерилизации.
Однако шовный материал может поступать в стационары и нестерильным. Тогда он стерилизуется химическими препаратами или паром под давлением в режиме I по ОСТ 42-21 -2—85. При отсутствии возможности стерилизации паром под давлением для обработки шелка, льняной нити может быть применен традиционный метод Кохера:
1. Мытье мотков шелка в горячей воде с применением мыла или CMC до полной чистоты нитей с трехкратной сменой воды. После этого нити высушивают стерильным полотенцем и наматывают на стеклянные катушки.
2. Катушки с шелком заливают эфиром на 24 часа в емкости с притертой пробкой.
3. После высушивания катушки переносят в банку с притертой пробкой, заполненную 70% раствором этилового спирта, на 24 ч.
4. Катушки с шелком стерильным инструментом вынимают из емкости со спиртом и погружают в 1:1000 раствор кипящей сулемы на 10 мин.
5. По окончании времени обработки сулему сливают, а катушки с шелком оставляют в этой же герметично закрытой емкости на 24 ч. Затем одну катушку берут на посев для оценки качества стерильности. Приготовленные катушки с шелком хранят в герметичных емкостях с 96% этиловым спиртом. Спирт меняют каждые 10 дней. Перед использованием катушки с шелком еще раз кипятят в 1:1000 растворе сулемы в течение 2 мин.
Капроновые нити после стирки и обработки в эфире могут быть простерилизованы паром под давлением в режиме II (ОСТ 42-21-2—85).
Металлическую леску и скрепки стерилизуют так же, как и металлический инструментарий.

10. Устройство, оборудование, организация работы операционного блока. Методы и виды уборки помещений.
Асептика наиболее тщательно должна соблюдаться в операционном блоке. Операционная должна быть отделена от других подразделений больницы. В операционном блоке имеются операционные, предоперационные, хозяйственные комнаты для персонала, автоклавная.

В операционной пол и стены должны иметь гладкую поверхность, лучше всего из кафеля, которые могут быть легко подвергнуты дезинфекции. Операционная бригада перед операцией полностью переодевается в стерильную спец.одежду, студенты должны посещать операционные в чистых халатах, чепчиках, масках, бахилах, без шерстяной одежды, с аккуратно спрятанными волосами.
Уборка операционных производится влажным способом. Различают:
1.Предварительную уборку- перед операцией;
2.Текущую уборку- в ходе операции;
3.Ежедневная уборка- после операции;
4.Генеральная уборка- 1 раз в неделю;
Для уменьшения бактериальной загрязненности операционных используют воздухоочистители, бактерицидные лампы.

11. Методы подготовки рук к операции, контроль стерильности.

Хирург и операционная сестра должны постоянно следить за состоянием кожи рук (профилактика микротравматизма, стрижка ногтей, частое мытье рук при их загрязнении и т.д.). Цель обработки рук перед операцией заключается в освобождении их от микроорганизмов, находящихся как на поверхности кожных покровов, так и в их толще (потовые, сальные железы, волосяные фолликулы). Обработка рук производится в два этапа:
1. Механическая очистка кожи путем мытья рук под проточной водой с использованием CMC или мыла. При этом могут применяться щетки, резиновые губки и т.д.
2. Непосредственная обработка рук растворами химических антисептических веществ. В зависимости от вида применяемого химического препарата существует несколько различных методик обработки рук.
Обработка рук 2,4% раствором первомура (рецептура С-4)
1. Руки моют теплой проточной водой с мылом в течение 1 мин.
2. Тщательно вытирают сухим полотенцем или салфеткой.
3. Обрабатывают кожу рук раствором первомура в течение 1 мин.
4. Вытирают руки стерильными салфетками.
Обработка рук дегмицидом
1. Перед обработкой дегмицидом мытье рук с мылом не обязательно, т.к. раствор дегмицида обладает моющими средствами.
2. Обработка производится путем протирания рук двумя поролоновыми губками, смоченными 1 % раствором дегмицида (по 3 мин каждой губкой).
3. Образовавшуюся пену и остатки раствора удаляют стерильными салфетками.
Обработка рук спиртовым раствором хлоргексидина
1. Руки моют в теплой проточной воде с мылом.
2. В течение 3 мин руки протирают салфеткой, смоченной 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина.
3. Вытирают руки стерильными салфетками. Обработка рук 0,1% раствором роккал
1. Моют руки под проточной водой в течение 2 мин с использованием губок.
2. Руки высушивают сухим чистым полотенцем.
3. Обрабатывают руки 0,1% раствором роккала 2 мин дважды.
4. Высушивают руки стерильными салфетками.
Обработка рук йодоформом и гексахлорофеном
1. Мытье рук с мылом перед обработкой йодоформом и гексахлорофеном, если они сильно не загрязнены, не обязательно.
2. Обработка рук в шампуне из йодоформа и гексахлорофена проводится в течение 5 мин (в эмалированном тазу либо в другой емкости).
3. Руки высушивают стерильной салфеткой и обрабатывают 70% раствором этилового спирта.
Обработка рук церигелем
1. Руки моют с мылом теплой проточной водой.
2. Тщательно высушивают сухим чистым полотенцем.
3. На сухую кожу рук наносят 3-5 мл церигеля и в течение 8-10 с аккуратно распределяют раствор равномерным слоем по всей поверхности рук.
4. Руки сушат под потоком воздуха от вентилятора в течение 2-3 мин до образования тонкой прозрачной пленки.
5. После операции пленку снимают марлевым шариком со спиртом.
При использовании церигеля применение перчаток не обязательно.
При всех остальных методиках следует надевать перчатки, т.к. кожа рук не стерилизуется!
Разработана методика обработки рук с применением ультразвука (кавитации): руки моют с мылом и протирают сухим полотенцем. Затем опускают в ванну УЗ-аппарата (ап­парат Ультра-Эйс, Япония), заполненную 1% раствором гибитана. Время обработки 30 с.
12. Операционное поле (определение). Методы подготовки к операции.
Операционное поле так же, как и руки хирурга, подвергается специальной обработке с целью предупреждения инфицирования раневой поверхности в ходе операции.
Для обработки операционного поля могут использоваться различные химические антисептики: первомур, йодонат, йодопирон, катамин, спиртовой раствор хлоргексидина, 70% этиловый спирт, дезоксон-1, раствор бриллиантовой зелени и т.д. Зона операционного поля должна обрабатываться широко, т.к. в процессе оперативного вмешательства возможно ее расширение (необходимость удлинения разреза, вы­полнение дополнительных кожных разрезов и пр.). С целью механической очистки кожи больной за 12 ч до операции [если позволяет состояние) должен принять общую ванну или вымыться под душем. Не более чем за 2-2,5 ч. до операции в зоне операционного поля сбривается волосяной покров.
Наиболее широко распространена последовательность обработки операционного поля по принципу Гроссиха — Филончикова:
- смазывание кожи раствором антисептика до и после обкладывания операционного поля стерильным бельем;
- смазывание кожи антисептиком перед наложением швов на кожу и после.
Хирурги, используя при обработке операционного поля принцип Гроссиха — Филончикова, часто применяют комбинацию нескольких химических антисептиков (йодоформ и спирт, первомур и спирт и т.д.)
  1   2   3   4   5   6   7   8   9   10   11
написать администратору сайта